| 特点 | 多次重复结果表明,最小检出量为27.2pg/ml。 |
|---|---|
| 特性 | 与小鼠的BDNF、 NT-3、CNTF、 NT-4和人CNTF、GDNF均没有交叉反应,与大鼠的β-NGF交叉反应性为95%,与人的β-NGF交叉反应性为150%. | 优势 | 板内,板间变异系数均<10% |
| 特点 | 多次重复结果表明,最小检出量为27.2pg/ml。 |
|---|---|
| 特性 | 与小鼠的BDNF、 NT-3、CNTF、 NT-4和人CNTF、GDNF均没有交叉反应,与大鼠的β-NGF交叉反应性为95%,与人的β-NGF交叉反应性为150%. | 优势 | 板内,板间变异系数均<10% |
小鼠神经生长因子贝塔(b-NGF)定量
分析酶联免疫检测试剂盒
本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的β-NGF浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整, 如有疑问请与安徽巧伊生物科技有限公司联系,我们将提供力所能及的帮助。
β-NGF简介:
NGF最初分离出来是非共价三聚体蛋白,分别由α、β、γ三个亚基组成,其中β亚基,也叫β-NGF,具有完整的NGF生物学活性。重组小鼠β-NGF是两个120个氨基酸多肽的同二聚体。在氨基酸水平上,它与人β-NGF的同源性约为90%,与大鼠β-NGF的同源性为95.8%。
β-NGF 已被证明是强效的神经营养因子,在外周神经中感觉神经元和交感神经系统的发育起到重要的作用。此外,β-NGF还是一个多功能的细胞因子,已有研究表明,β-NGF在免疫调节中扮演重要的角色,像IL-1,TNF-α , PDGF和 TGF-β等细胞因子能够刺激星形胶质细胞的NGF的分泌增强。NGF也可刺激人的B淋巴细胞的生长和分化,同时也证明了在小鼠中NGF具有抑制腹膜中性粒细胞的调亡。
检测原理:
本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中β-NGF的浓度。β-NGF捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的β-NGF会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗小鼠β-NGF抗体后,抗小鼠β-NGF抗体与β-NGF接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在β-NGF将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,β-NGF浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中β-NGF浓度。
小鼠β-NGF定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:
组分 | 规格(96T/48T) |
小鼠β-NGF预包被板 | 12条/6条 |
样本分析缓冲液 | 5ml/3ml |
标准品稀释液 | 10ml/5ml |
小鼠β-NGF标准品 | 2支/1支(冻干) |
小鼠β-NGF生物素化检测抗体 | 10ml/5ml |
亲和素连接的HRP酶 | 10ml/5ml |
浓缩洗涤液 20× | 30ml/15ml |
TMB底物 | 10ml/5ml |
中止液 | 5ml/3ml |
封板胶纸 | 3/2张 |
说明书 | 1份 |
标本收集:
1.标本的收集请按下列流程进行操作;
A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;
B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液;
C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集;
D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。
2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;
3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。
4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。
注:小鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。
注意事项:
1.试剂盒请保存在2~8℃。
2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。
3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。
4.底物请勿接触氧化剂和金属。
5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染。
6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。
7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。
8.室温反应,请严格控制在25~28℃。
9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。
10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。
11.加样过程中避免气泡的产生。
12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。
检测前准备工作:
1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。
2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。
3.标准品:加入标准品稀释液 1ml至冻干标准品瓶中使β-NGF终浓度达到2000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置15~20分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点,最高浓度为2000pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

洗涤方法:
自动洗板机或小鼠工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。
实验过程需自备的材料:
1.不同规格的加样枪及相应的枪头; 2.酶标仪;
3.自动洗板机; 4.去离子水或双蒸水;
操作步骤:
1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃。
2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。
3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本, 如稀释量大,请将样本与样本分析缓冲液等量加入,不足部分用标准品稀释液补充至100ul。
4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
5.加入生物素化抗体工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育60分钟。
6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
7.加入HRP亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/孔)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。
8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。
9.加入显色剂TMB底物100ul/孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。
10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。
结果判断:
1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。
2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值。
3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。
4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。
典型数值和参考曲线
浓度pg/ml | 典型OD值1 | 典型OD值2 | OD平均值 |
0 | 0.084 | 0.068 | 0.076 |
62.5 | 0.222 | 0.184 | 0.203 |
125 | 0.372 | 0.342 | 0.357 |
250 | 0.585 | 0.531 | 0.558 |
500 | 0.971 | 0.946 | 0.9585 |
1000 | 1.499 | 1.437 | 1.468 |
2000 | 2.133 | 1.929 | 2.031 |